CHLAMYDIA TRACHOMATIS - PCR

LIQUIDO DE DRENAJE Toma: descartar la primera porción del liquido. Limpiar el orificio con suero fisiológico estéril. Aspirar con jeringa estéril sin aguja desde la profundidad del trayecto o cavidad. En sistema cerrado: puncionar el puerto de muestreo previa desinfección con alcohol 70%; nunca abrir la bolsa. Si el volumen es mínimo: hisopo de Dacron en profundidad (opción de menor rendimiento. Sin hisopo de algodón y madera). Recipiente: jeringa sin aguja con tapón, frasco estéril de tapa a rosca, o frasco de hemocultivo si se sospecha anaerobios. Volumen mínimo 1 mL. Rotulo obligatorio: nombre, fecha y hora, LIQUIDO DE DRENAJE, Conservación: aeróbico en frasco estéril: 2-8°C hasta 24 horas. En frasco de hemocultivo: temperatura ambiente, estable hasta 5 días. Anaeróbico: temperatura ambiente estricta, procesar antes de 30 minutos, nunca refrigerar. Rechazo: fluido tomado de la bolsa del sistema cerrado / hisopo seco / jeringa con aguja / muestra para anaerobios refrigerada / sin rótulos / volumen insuficiente. BIOPSIA DE TEJIDO Toma:Desinfectar piel perilesional con alcohol y povidona iodada; dejar secar. Limpiar la superficie de la lesión con suero fisiológico. Tomar tejido viable del borde activo, nunca del centro necrótico. Tamaño mínimo 3 mm (punch) o fragmento mayor de 0,5 cm³ (intraoperatorio). Si se requiere además anatomía patológica, tomar dos fragmentos con instrumentos distintos: uno para cultivo (frasco seco), otro para patología (formol). Recipiente: frasco estéril de tapa a rosca, seco. En fragmentos menores de 5 mm agregar 2-3 gotas de suero fisiológico sin conservantes para evitar desecación. Nunca formol. Nunca congelar. Rotulo obligatorio: nombre, fecha y hora, BIOPSIA DE TEJIDO (especificar método: punch / curetaje / escisional / intraoperatoria), localización anatómica exacta. Conservación: temperatura ambiente, remitir al laboratorio inmediatamente. Rechazo: tejido en formol o en cualquier fijador histológico / tejido desecado / muestra congelada / tejido exclusivamente necrótico sin consulta previa / medio de transporte con bacteriostático / múltiples biopsias sin localización individual. PUNTA DE CATETER Toma: tomar hemocultivos pareados antes de retirar el catéter (uno por la luz del catéter y uno periférico); la punta sin hemocultivos tiene valor clínico muy limitado. Desinfectar la piel de inserción con clorhexidina alcohólica 2%; dejar secar. Retirar el catéter con técnica aséptica. Con tijera o bisturí estériles y sujetando con pinzas, cortar un segmento de 5 cm del extremo distal. Depositar en frasco estéril seco sin agregar ningún líquido. Recipiente: frasco estéril de tapa a rosca, seco, sin suero fisiológico ni ningún medio. El segmento de 5 cm debe quedar suelto dentro del frasco. Rotulo obligatorio: nombre, fecha y hora de retiro, PUNTA DE CATETER, tipo de catéter (CVC / arterial / hemodiálisis / PICC / nutrición parenteral / urinario permanente), luz si aplica, sitio de inserción, número de historia o protocolo. Conservación: temperatura ambiente, procesar dentro de 2 horas. Si hay demora inevitable: 2-8°C hasta 24 horas. No congelar. Rechazo: segmento menor de 2 cm / punta recibida en cualquier líquido (suero, formol) / sin tipo de catéter ni sitio de inserción / múltiples puntas de distintos catéteres en un mismo frasco / frasco abierto

Este estudio no requiere preparación previa. Puede concurrir al laboratorio en el horario de extracciones, de acuerdo al turno otorgado.

Refrigerada (2-8°C)